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當(dāng)前位置:首頁產(chǎn)品中心染色試劑組織染色AS11L011蘇木素伊紅(HE)染色試劑盒

蘇木素伊紅(HE)染色試劑盒

產(chǎn)品簡介

蘇木素伊紅(HE)染色試劑盒綜合了多種經(jīng)典的方法配制而成。該溶液無汞,可用于免疫組化復(fù)染和H&E染色。

產(chǎn)品型號:AS11L011
更新時間:2025-06-11
廠商性質(zhì):生產(chǎn)廠家
訪問量:373
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品牌Life-iLab/李記生物貨號AS11L011
供貨周期現(xiàn)貨應(yīng)用領(lǐng)域綜合

蘇木素-伊紅染液蘇木素伊紅(HE)染色試劑盒

產(chǎn)品描述

蘇木素伊紅(HE)染色試劑盒蘇木素-伊紅染液綜合了多種經(jīng)典的方法配制而成。該溶液無汞,可用于免疫組化復(fù)染和H&E染色。


訂購信息

產(chǎn)品名稱

貨號

規(guī)格

蘇木素伊紅(HE) 染色試劑盒蘇木素-伊紅染液

AS11L011

200mL


產(chǎn)品組分

組分

規(guī)格

A. 蘇木素染液

100mL

B. 伊紅染液

100mL


運輸與保存

常溫運輸。常溫室溫運輸。室溫保存,有效期12個月。


使用方法

1.試劑準(zhǔn)備

酸酒精:在100mL 70%乙醇中加入1mL 鹽酸,室溫保存。注:冰凍切片后,各種步驟(干燥,乙醇或甲醇固定,熱固定,使用帶電的或有粘性的蓋片)保證組織切片在染色過程中不脫落。

注:注意:冰凍切片后,各種步驟(干燥,乙醇或甲醇固定,熱固定,使用帶電的或有粘性的蓋片)保證組織切片在染色過程中不脫落。

2.95%乙醇:在HE染色開始前,組織切片需要固定并水化。將切片置于95%乙醇中約2min,開始水化并固定組織。

注:注意:跳過使用95%乙醇對組織進(jìn)行水化和固定,并不影響形態(tài)學(xué)上的細(xì)節(jié)。

3.水化:進(jìn)一步對組織切片進(jìn)行水化3-~5min,并沖掉前一步殘留的乙醇。

注:注意:與第一步相似,跳過水化對于組織染色的質(zhì)量非常小。

4.蘇木素:水化后,組織切片用蘇木素染色1-~3min,可根據(jù)染色結(jié)果和要求調(diào)整染色時間。蘇木素是一種基本染料,可以對細(xì)胞的酸性成分進(jìn)行染色,包括核酸、粘多糖、酸性糖蛋白,將他們?nèi)境伤{(lán)色或藍(lán)紫色。注:沒有蘇木素,伊紅會將組織染成亮粉紅色;顯而易見的是缺乏細(xì)胞核。組織結(jié)構(gòu)很難區(qū)分,細(xì)胞內(nèi)成分幾乎都不存在,難以辨別。針對上述問題,可以使用蘇木素進(jìn)行復(fù)染。

(1)       染色較弱是由于:自身溶解或者固定不好;過度脫鈣;染色時間不足;過度脫色(酸與醇的比例過高或者酸乙醇脫色時間過長);蘇木素的作用較弱(蘇木素氧化過度(過老)或水稀釋過度);漂洗溶液的污染;切片過薄;乙醇的去除或者染色前水的漂洗不充分。

(2)       染色過度是由于:組織切片干燥;蘇木素濃度過高;染色時間過長;載玻片粘合劑過多;脫色過弱或時間不足;切片過厚;熱暴露的時間過長。

5.水洗:蘇木素染色后,用水洗組織是非常重要的。這一步以及隨后的水洗,可將多余的染料,媒染劑等去除。適當(dāng)?shù)钠纯梢匀コ砻娼饘俟鉂桑饘俟鉂煽勺柚固K木素的染色。注:跳過此步,將產(chǎn)生不好的結(jié)果,例如沉淀的形成,染液的稀釋,表面金屬光澤的存在。

6.酸酒精:酸酒精分色劑3-5s。在蘇木素染色方法中,組織切片有意過度染色,酸酒精將去除多余的染料以及玻片上的背景染色。

注:若省略此步驟,切片將呈暗紫色,嗜酸性結(jié)構(gòu)(如膠原)不會顯現(xiàn)出明亮的粉紅色,導(dǎo)致組織結(jié)構(gòu)之間難以區(qū)分,從而影響對切片的準(zhǔn)確判斷。另外,分色過度可能是由于:酸濃度過高;脫色時間過長等。分色不足是由于:酸濃度過低;脫色時間不足;在切片上有多余的蛋白或者明膠等。

7.水洗:水洗30s,終止酸酒精反應(yīng),進(jìn)一步阻止酸酒精從組織切片上將大量蘇木素去除。注:如果切片沒有經(jīng)過漂洗,酸酒精可以過度脫色。如果不去除脫色劑,酸酒精將持續(xù)從組織切片上去除蘇木素。

8.自來水沖洗或用藍(lán)化液藍(lán)化:自來水沖洗3-5min,可起到發(fā)藍(lán)處理,將紫紅色的蘇木素轉(zhuǎn)變?yōu)樗{(lán)紫色。通常,發(fā)藍(lán)試劑是pH依賴性的,由堿性溶液構(gòu)成。因此,如果自來水作為發(fā)藍(lán)試劑,pH值的每天監(jiān)控是非常重要的,因為自來水的pH值可能每天都會波動。或用藍(lán)化液藍(lán)化,30s-1min;流動的自來水沖洗5min;注:跳過發(fā)藍(lán)試劑步驟,將會導(dǎo)致蘇木素染液的顏色發(fā)生微妙的變化,難以區(qū)分。代替深藍(lán)色,細(xì)胞核將呈現(xiàn)紫色,有時甚至是紅色。細(xì)胞核不可過度藍(lán)染。如果組織染色過藍(lán),一般是在組織切片上蘇木素過多所致。

9.水洗:為伊紅復(fù)染做準(zhǔn)備,通過水洗30sec,將多余的發(fā)藍(lán)試劑去除。因為在堿性環(huán)境下,伊紅無法染色,水洗去除發(fā)藍(lán)試劑將允許伊紅保持其酸性pH值,使伊紅得以均勻復(fù)染。注:發(fā)藍(lán)試劑之后,如果沒有水洗,組織切片無法正確使用伊紅染色。因此,酸性結(jié)構(gòu)將被染為蒼白色并且不均勻,進(jìn)而導(dǎo)致錯誤的判斷。

10.伊紅:為了正確區(qū)分胞內(nèi)結(jié)構(gòu),伊紅是出色的蘇木素復(fù)染劑。伊紅復(fù)染30-60s,可根據(jù)染色結(jié)果和要求調(diào)整染色時間。伊紅是酸性染料,可染細(xì)胞質(zhì),尤其是線粒體、分泌顆粒和膠原。它可以區(qū)分細(xì)胞內(nèi)不同的細(xì)胞器以及不同的結(jié)締組織。注:使用伊紅復(fù)染組織切片的失敗,將導(dǎo)致組織切片的低分化。

(1)       染色較弱是由于:組織切片過薄;染色時間不足;隨后95%酒精分化過度。

(2)       染色過度是由于:染液濃度較高(可能是由于過度蒸發(fā));組織切片過厚;染色時間過長;隨后95%酒精分化不足。

(3)       伊紅染色未分化(一種顏色)是由于:固定不徹的底;過度染色(染色時間過長或染液濃度過高)。

11.95%乙醇:95%乙醇處理2s-1min,根據(jù)染色結(jié)果和要求調(diào)整;伊紅分化將產(chǎn)生不同的粉色。注:如果95%乙醇被稀釋(例如,從前一步染色中攜帶了伊紅),分化的效果較差。

12.100%乙醇:通過100%乙醇使組織切片脫色。100%乙醇處理1min;再用新的100%乙醇處理1min。注:這一步很難引起注意,若無95%乙醇,難以區(qū)分酸性結(jié)構(gòu),組織切片成為粉色。若無100%乙醇脫水,組織切片不能脫水,導(dǎo)致在蓋片下形成水珠。這些水珠可與下一步的二甲苯結(jié)合而形成白色混濁物,這將影響組織切片的質(zhì)量。

13.二甲苯:二甲苯處理5min。在充分脫水后,二甲苯可將組織切片上的酒精去除。去除酒精后,在載玻片上加蓋玻片時,二甲苯也可作為包埋劑確保可溶解。由于有潛在的毒性,二甲苯替代品,例如檸檬烯、環(huán)烷烴也可使用。替代品可提供相同的組織染色質(zhì)量,并且他們使用更安全,操作更簡單。注:當(dāng)跳過此步驟時,不使用二甲苯透明,酒精將會保存于組織切片上,導(dǎo)致伊紅從切片上流出。

14.封片:中性樹膠封片,自然風(fēng)干或烤干,顯微鏡觀察。

染色結(jié)果:細(xì)胞核染為藍(lán)色;細(xì)胞質(zhì)染為紅色。


注意事項

1.       本產(chǎn)品僅限于科學(xué)實驗研究使用,不得用于臨床診斷、治療等領(lǐng)域。

2.       為了您的安全和健康,請穿實驗服并戴一次性手套操作。

3.       試劑應(yīng)保存于陰涼、干燥、通風(fēng)良好的環(huán)境中。

4.       第一次使用本試劑盒時建議先取1-2個樣品做預(yù)實驗。

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